Editor de las revistas FEMS Microbiology Reviews, Microbial Biotechnology y Revista Chilena de Historia Natural y revisor de más de 45 artículos en 24 revistas ISI. Su grupo de investigación (post-doctorantes, tesistas de doctorado y estudiantes de licenciatura) llega al Laboratorio de Bioingeniería de la FIC, para continuar desarrollando investigación en las siguientes líneas:

1.- Degradación bacteriana de contaminantes aromáticos: la bacteria Cupriavidus necator como modelo para estudios de biorremediación.

2.- Bacterias que promueven el crecimiento de plantas: la bacteria Burkholderia phytofirmans como modelo de bacteria beneficiosa para plantas.

3.- Efecto de la comunidad microbiana en la colonización de relaves por plantas pioneras. La planta Baccharis linearis y su asociación con microorganismos en relaves de cobre.

4.- Dinámica y estructura de comunidades microbianas expuestas a contaminación por cobre y otros metales, en suelos, sedimentos, intermareal rocoso, entre otros.

5.- Participación de microorganismos en biopelículas asociadas a rinitis agudas.

6.- Detección, aislamiento y cultivo de microorganismos productores de aceites a escala de laboratorio.

Adicionalmente, el laboratorio tiene interés en las siguientes áreas en las que tiene algún nivel de experiencia:

7.- Evaluación del tratamiento microbiano de efluentes de la producción de pulpa de celulosa blanqueada.

8.- Análisis de la degradación bacteriana de compuestos derivados de la lignina: cloroligninas, compuestos de bajo peso molecular.

9.- Degradación microbiana de derivados de petróleo.

10.- Análisis de microorganismos en comunidades biolixiviantes.

LINEAS DE INVESTIGACIÓN

1.- Degradación bacteriana de contaminantes clorofenólicos. Regulación de la expresión de genes catabólicos. Análisis genómico de Cupriavidus necator. Presencia y actividad en el ambiente de microorganismos catabólicos. ( LINK A 010101)

2.- Bacterias que promueven el crecimiento de plantas: la bacteria Burkholderia phytofirmans como modelo de bacteria beneficiosa para plantas. (LINK A 0105)

3.- Efecto de la comunidad microbiana en la colonización de relaves por plantas pioneras. La planta Baccharis linearis y su asociación con microorganismos en relaves de cobre. (LINK A 0106)

4.- Dinámica y estructura de comunidades microbianas expuestas a contaminación por cobre y otros metales, en suelos, sedimentos, intermareal rocoso, entre otros.

5.- Participación de microorganismos en biopelículas asociadas a rinitis agudas (LINK A 0107)

6.- Detección, aislamiento y cultivo de microorganismos productores de aceites a escala de laboratorio. (LINK A 0115)

PROYECTOS VIGENTES

• Changes in biodiversity, structure and function in microbial communities associated with anthropogenic disruptions. Center for Advanced Studies in Ecology and Biodiversity. FONDAP-CASEB. Research Sub Program 7. Research Associate. (2002-2012).
• Análisis de la expresión génica en el catabolismo de compuestos aromáticos y cloroaromáticos en el modelo bacteriano Cupriavidus necator, en cultivos líquidos y en microcosmos de suelos/planta. FONDECYT N°1070343. Investigador principal. (2007-2010).
• Núcleo Milenio en Genómica Funcional de Plantas. MIDEPLAN. Investigador Asociado. (2009-2011).
• Efecto de la colonización de Burkholderia phytofirmans PsJN en el crecimiento de plantas y su resistencia a estrés abiótico. Proyecto POST-DOCTORADO FONDECYT. Thomas Ledger. 2009-2010.
• Caracterización de los cambios de expresión génica que ocurren en plantas de Arabidopsis thaliana en respuesta a la colonización por la bacteria promotora de crecimiento Burkholderia phytofirmans PsJN” Proyecto POST-DOCTORADO FONDECYT María Josefina Poupin. 2010-2011.
• Línea de Inserción de Capital Humano avanzado en la Academia (PAI), Folio 79090076. CONICYT. (2010-2012).

PUBLICACIONES ISI

• “Bioaugmentation with Pseudomonas sp. strain MHP41 promotes simazine attenuation and bacterial community changes in agricultural soils”. Morgante, V., López-López, A., Flores, C., González, M., González, B., Vásquez, M., Rosselló-Mora, R., & Seeger, M. FEMS Microbiology Ecology. 71:141-126. (2010).
• “Sulfate reduction, molecular diversity, and copper amendment effects in bacterial communities enriched from sediments exposed to copper–mining residues”. Pavissich, J.P., Silva, M. & González, B. Environmental Toxicology & Chemistry. 29:256-264. (2010).
• “Modified 3-oxoadipate pathway for the biodegradation of methylaromatics in Pseudomonas reinekei MT1 . Marín, M. Pérez-Pantoja, D. Donoso, R.A., Wray, V., González, B., Pieper, D.H. Journal of Bacteriology. 192:1543-1552. (2010).
• “Novel polymerase chain reaction primers for the specific detection of bacterial copper P-type ATPases gene sequences in environmental isolates and metagenomic DNA”. De la Iglesia, R., Valenzuela-Heredia, D., Pavissich, J.P., Freyhoffer, S., Andrade, S., Correa, J.A. & González, B. Letters in Applied Microbiology. 50:552-562. (2010).
• “A real-time PCR-based strategy for the detection of Paenibacillus larvae vegetative cells and spores to improve the diagnosis and the screening of American foulbrood”. Martinez, J., Simon, V., González, B., Conget, P. Letters in Applied Microbiology. 50:603-610. (2010).
• “Changes in epiphytic bacterial communities of intertidal seaweeds modulated by host, temporality and copper enrichment”. Hengst, MB., Andrade, S., González, B. & Correa, JA. Aceptado en Microbial Ecology. (2010).
• “Culture dependent and independent analysis of bacterial communities involved in copper plumbing corrosion”. Pavissich, J.P., Vargas, I.T., González, B., Pastén, P.A. & Pizarro, G.P. Aceptado en J. Applied Microbiology. (2010).
• “The complete multipartite genome sequence of Cupriavidus necator JMP134, a versatile pollutant degrader”. Lykidis, A., Pérez-Pantoja, D., Ledger, T., Mavrommatis, K., Anderson, I., Ivanova, N., Hooper, S., Lapidus, A., González, B., Kyrpides, N. PLOS One. 5(3):e9729. (2010).
• “Novel lineages of Prochlorococcus thrive within the oxygen minimum zone of the eastern tropical South Pacific”. Lavin, P., González, B., Santibáñez, J.F., Scanlan, D. & Ulloa, O. Aceptado en Environmental Microbiology Reports. (2010)
• “Novel -ketoglutarate dioxygenase tfdA related gene are found in soil DNA after exposure to phenoxyalkanoic herbicides”. Gazitúa, M.C.. Slater, A.W., Melo, F.. & González, B. Aceptado en Environmental Microbiology. (2010).
• “3-chlorobenzoate is taken up by a chromosomally encoded transport system in C. necator JMP134”. Ledger, T., Flores-Aceituno, F., & González, B. Microbiology. 155:2757-2765. (2009).
• “Involvement of several transcriptional regulators in the differential expression of tfd genes in in Cupriavidus necator JMP134”. Trefault, N., Guzmán. L., Pérez, H., Godoy, M. & González, B. International Microbiology. 12:97-106. (2009).
• “Genuine genetic redundancy in maleylacetate reductase genes involved in degradation of haloaromatic compounds by Cupriavidus necator JMP134”. Pérez-Pantoja, D., Donoso, R., Sánchez, M.A. & González, B. Microbiology. 155:3641-3651. (2009).
• “Hydroquinone and H2O2 differentially affect the ultrastructure and expression of ligninolytic genes in the basidiomycete Ceriporiopsis subvermispora”. Amoroso, A., Mancilla, R., González, B., & Vicuña, R. FEMS Microbiol. Lett. 294:232-238. (2009).
• “Microbiologically induced corrosion of copper pipes in low pH water”. Reyes, A., Letelier, M.V. De la Iglesia, R., González, B., & Lagos, G. Int. Biodet. Biodeg. 61:135-141. (2008).
• “Changes in bacterial community structure associated with coastal copper enrichment”. Morán, A.C., Hengst, M.B, De la Iglesia, R., Andrade, S., Correa, J.A. & González, B. Environ. Toxicol. Chem. 27:2239-2245. (2008).
• “Metabolic reconstruction of aromatic compounds degradation from the genome of the amazing pollutant degrading bacterium Cupriavidus necator JMP134”. Pérez-Pantoja, D, De la Iglesia, R., Pieper, D.H., & González, B. FEMS Microbiol. Rev. 32:736-794. (2008).
• “Diversity of the marine picocyanobacteria Prochlorococcus and Synechococcus assessed by terminal restriction fragment length polymorphisms of 16S-23S rRNA internal transcribed spacer sequences”. Lavín, P., Gómez, P., González, B., & Ulloa, O. Rev. Chil. Hist. Nat. 81: 515-531. (2008).
• “Genetic characterization of the 2,4,6-trichlorophenol degradation in Cupriavidus necator JMP134”. Sánchez, M.A. & González, B. Appl. Environ. Microbiol. 73:2769-2776. (2007).
• “Role of eukaryotic microbiota in soil survival and catabolic performance of the 2,4-D herbicide degrading bacteria Cupriavidus necator JMP134”. Manzano, M; Morán, A.C.; Tesser, B. & González, B. Anton. Leeuwen Int. J. Gen. Molec. Microbiol. 91:115-126. (2007).
• “Factors influencing the composition of bacterial communities found at abandoned copper-tailings dumps”. De la Iglesia, R., Castro, D., Ginocchio, R., van der Lelie, D., and González, B. J. Appl. Microbiol. 100:537-544 (2006).
• “Chlorophenol hydroxylases encoded by pJP4 plasmid differentially contribute to chlorophenoxyacetic acid degradation”. Ledger, T., Pieper, D.H., & González, B. Appl. Environ. Microbiol. 72:2783-2792 (2006).
• “Simazine treatment history determines a significant herbicide degradation potential in soils that is not improved by bioaugmentation with Pseudomonas sp. ADP”. Morán, A.C., Müller, A., Manzano, M., & González, B. J. Appl. Microbiol. 101:26-35 (2006).
• “Molecular and population analyses of a recombination event in the catabolic plasmid pJP4”. Larraín-Linton, J., De la Iglesia, R., Melo, F. & González, B. J. Bacteriol. 188:6793-6801 (2006).
• “Soil bacteria are differentially affected by the resin of the medicinal plant Pseudognaphalium vira vira and its main component kaurenoic acid”. Gil, F., De la Iglesia, R., Mendoza, L., González, B. & Wilkens, M. Microb. Ecol. 52:10-18. (2006).
• “Incomplete processing of peroxidase transcripts in the lignin degrading fungus Phanerochaete chrysosporium”. Stuardo, M., Larrondo, L.F., Vásquez, M., Vicuña, R., & González, B. FEMS Microbiol. Lett. 242: 37-44. (2005).
• “Molecular approach for analysis of model fungal genes encoding ligninolytic peroxidases in wood-decaying soil systems”. Stuardo, M., Vásquez, M., Vicuña, R. & González, B. Lett. Appl. Microbiol. 38: 43-49. (2004).
• “Genetic organization of the catabolic plasmid pJP4 from Ralstonia eutropha JMP134 (pJP4) reveals mechanisms of adaptation to chloroaromatic pollutants and evolution of specialized chloroaromatic pathways”. Trefault, N., De la Iglesia, R., Molina, A.M., Manzano, M., Ledger, T., Pérez-Pantoja, D., Sánchez, M.A., Stuardo, M., & González, B. Environ. Microbiol. 6: 655-668 (2004).
• “Characterization of a multicopper oxidase gene cluster in Phanerochaete chrysosporium and evidence of altered splicing of the mco transcripts”. Larrondo, L.F., González, B., Cullen, D., & Vicuña, R. Microbiology. 150:2775-2783. (2004).
• “A previously unexposed forest soil microbial community degrades high levels of the pollutant 2,4,6-trichlorophenol”. Sánchez, M.A., Vásquez, M., & González, B. Appl. Environ. Microbiol. 70: 7567-7570. (2004).
• “Efficient turnover of chlorocatechols is essential for growth of Ralstonia eutropha JMP134 (pJP4) in 3-chlorobenzoic acid”. Pérez-Pantoja, D., Ledger, T., Pieper, D.H. & González, B. J. Bacteriol. 185: 1534-1542. (2003).
• “Poly-hydroxyalkanoates consumption during degradation of 2,4,6-trichlorophenol by Sphingopyxis chilensis S37”. Godoy, F.A., Bunster, M., Matus, V., Aranda, C., González, B., & Martínez, M.A. Lett. Appl. Microbiol. 36: 315-320. (2003).
• “Efficient degradation of 2,4,6-trichlorophenol requires a set of catabolic genes related to tcp genes from Ralstonia eutropha JMP134 (pJP4)”. Matus, V., Sánchez, M.A., Martínez, M., & González, B. Appl. Environ. Microbiol. 69: 7108-7115. (2003).
• “Monitoring key reactions in degradation of chloroaromatics by in situ 1H nuclear magnetic resonance: solution structures of metabolites formed from cis-dienelactone”. Pieper, D.H., Pollmann, K., Nikodem, P., González, B., & Wray, B. J. Bacteriol. 184:1466-1470. (2002).
• “Kraft mill residues effects on Monterey Pine growth and soil microbial activity”. Jordan, M., Sánchez, M.A., Padilla, L., Céspedes, R., Osses, M., & González, B. J. Environ. Qual. 31:1004-1009. (2002).
• “The importance of different tfd genes during the degradation of chloroaromatics by Ralstonia eutropha JMP134”. Plumeier, I., Pérez-Pantoja, D., Heim, S., González, B., & Pieper, D.H. J. Bacteriol. 184:4054-4064. (2002).
• “The copy number of the catabolic plasmid pJP4 affects growth of Ralstonia eutropha JMP134 (pJP4) on 3-chlorobenzoate”. Trefault, N., Clément,P., Manzano, M., Pieper, D.H, & González, B. FEMS Microbiol. Lett. 212, 95-100. (2002).
• “Engineering bacterial strains through the chromosomal insertion of the chlorocatechol catabolism tfdICDEF gene cluster, to improve degradation of typical Kraft pulp mill effluent pollutants”. Bobadilla, R., Varela, C., Céspedes, R., González, B. EJB Electronic Journal of Biotechnology. 5:162-172, (2002).
• “Novel insights into interplay between xyl genes-encoded peripheral reactions and tfd genes-encoded chlorocatechol pathway for degradation of chlorobenzoates by Ralstonia eutropha JMP134”. Ledger, Th., Pieper, D.H., Pérez-Pantoja, D., & González, B. Microbiol. 148:3431-3440. (2002).
• “Molecular characterization of a deletion/duplication rearrangement in tfd genes from Ralstonia eutropha JMP134 (pJP4) that improves growth on 3-chlorobenzoic acid but abolishes growth on 2,4-dichlorophenoxyacetic acid”. Clément P., Pieper D. & González B. Microbiol. 147:2141-2148. (2001).
• “Role of tfdCIDIEIFI and tfdDIICIIEIIFII gene modules in catabolism of 3-chlorobenzoate by Ralstonia eutropha JMP134 (pJP4)”. Pérez-Pantoja, D., Guzmán, L., Manzano, M., Pieper, D., & González, B. Appl. Environ. Microbiol. 66:1602-1608. (2000).
• “Degradation of 2,4,6-trichlorophenol via chlorohydroxyquinol in Ralstonia eutropha JMP134 and JMP222”. Padilla, L., Matus, V., Zenteno, P., & González, B. J. Basic. Microbiol. 40(4):243-249 (2000).
• “Deletions of mob and tra transfer functions after mating of Ralstonia eutropha JMP134 (pJP4) with Escherichia coli harboring F’::Tn10”. Clément, P., Springael, D., González, B. Can. J. Microbiol. 46:485-489. (2000).
• “Tolerance to trichlorophenols in microorganisms from a polluted and a pristine site of a river”. Godoy,F., Zenteno, P., Cerda, F., González, B., & Martinez,M. Chemosphere. 38:655-662. (1999).
• “Effects of glucose and phenylalanine upon 2,4,6-trichlorophenol degradation by Pseudomonas paucimobilis S37 cells in a no-growth state”. Aranda, C., Godoy, F., González, B., Homo, J., & Martínez, M. Microbios. 100:73-82. (1999).
• “Degradation of chlorophenols by Alcaligenes eutrophus JMP134 (pJP4) in bleached Kraft mill effluents”. Valenzuela, J., Bumann, U., Padilla, L., Céspedes, R. & González, B. Appl. Environ. Microbiol. 63:227-232. (1997)
• “Characterization of a bacterial consortium degrading the lignin model vanillyl-ß-D-glucopyranoside”. Céspedes, R., González, B., Vicuña, R. J. Basic Microbiol. 37:175-180. (1997).
• “Degradation of environmental pollutants by Alcaligenes eutrophus JMP134 (pJP4)”. González,B., Clément,P., Céspedes,R., Valenzuela,J., Matus,V., Maturana,A., & Ehrenfeld,N. Environ. Toxicol. Wat. Qual. 11:205-211, (1996)
• “Microbial mineralization of 2,4,5-trichlorophenol in soil”. Matus,V., Vásquez, M., Vicente, M., & González, B. Environ. Sci. & Technol. 30:1472-1476. (1996).
• “Microbial removal of chlorinated phenols during aerobic treatment of effluents from radiata pine Kraft pulps bleached with chlorine-based chemicals, with or without hemicellulases”. Céspedes, R., Maturana, A., Bumann, U., Bronfman,M. & González, B. Appl. Microbiol. Biotechnol. 46:631-637. (1996).
• “Metabolism of mono and dichlorinated guaiacols by Rhodococcus ruber CA16”. Acevedo, C., Brezny, R., Joyce, T.W., & González, B. Curr. Microbiol. 30:63-67. (1995).
• “Degradation of trichlorophenols by Alcaligenes euthrophus JMP134”. Clement, P., Matus,V, Cárdenas, L. & González, B. FEMS Microbiol. Lett. 127:51-55, (1995).
• “Degradation of 4,5-dichloroguaiacol in soils”. González, B., Brezny, R., Herrera, M., & Joyce,T. World J. Biotechnol. Microbiol. 11:536-540, (1995).
• “Ability of natural bacterial isolates to metabolize high and low molecular weight lignin-derived molecules”. Vicuña,R., González,B., Seelenfreund,D., Rüttimann,C. & Salas,L. J. Biotechnol. 30:9-13 (1993).
• “Metabolism of chlorinated guaiacols by an Acinetobacter junii strain degrading guaiacol”. González,B., Acevedo,C., Brezny,R., & Joyce,T.W. Appl. Environ. Microbiol. 59:3424-3429. (1993).
• “Biotransformations and Toxicity Changes of Chlorolignins in Soil”. Brezny, R., Joyce, T., González,B., & Slimak, M. Environ. Sci. Technol. 27:1880-1884. (1993).
• “Microbial and biochemical characterization of a bacterial consortium isolated from decaying wood by growth on a ß-O-4 lignin-related dimeric compound”. Céspedes,R., Salas,L., Calderón,I., González,B. & Vicuña,R. Arch. Microbiol. 158:162-170 (1992).
• “Biotransformation in soil of chloroaromatic compounds related to bleach plant effluents”. Brezny,R., Joyce,T. & González,B. Wat. Sci. Technol. 26:397-406, (1992).
• “Benzaldehyde lyase, a novel thiamine-pyrophosphate requiring enzyme from Pseudomonas fluorescens biovar I”. González,B. Vicuña,R. J.Bacteriol. 171:2401-2405, (1989).
• “Degradation of diarylethane structures by Pseudomonas fluorescens biovar I A1”. González,B., Olave,I., Calderón,I. & Vicuña,R. Arch.Microbiol. 149:389-394, (1988).
• “Binding of BAL 31 RNA polymerase to PM2 DNA as determined by electron microscopy and protection against restriction endonuclease cleavage”. Bull,P., Susaeta,M., González,B., & Yudelevich,A. J.Virol. 62:3911-3913, (1988).
• “Metabolism of lignin model compounds of the arylglycerol-ß-arylether type by Pseudomonas acidovorans D3”. Vicuña,R., González,B., Mozuch,M. & Kirk,K. Appl.Environ. Microbiol. 53:2605-2609, (1987).
• “Monitoring bacterial consumption of low-molecular weight lignin derivatives by high-perfomance liquid chromatography”. Goycoolea,M., Seelenfreund,D., Rüttimann,C., González,B., & Vicuña,R. Enz.Microb.Technol. 8:213-216, (1986).
• “Comparative growth of natural bacterial isolates on various lignin-related compounds”. González,B., Merino,A., Almeida,M.S. & Vicuña, R. Appl.Environ.Microb. 52:1428-1432, (1986).
• “Electron microscopic mapping of Thermus thermophilus RNA polymerase binding sites on plasmid pBR322”. González,B., Davagnino,J. & Vicuña,R. Comp.Biochem.Physiol. 80B:485-487, (1985).
• “Electron microscopic mapping of E. coli RNA polymerase binding sites on plasmids from thermophilic bacteria”. González,B., Vásquez,C., Bull,P. & Vicuña,R. DNA. 3:251-257, (1984).
• “Plasmids from thermophilic bacteria”. (Minireview). Vásquez,C., González,B. & Vicuña,R. Comp.Biochem.Physiol. 78B:507-514, (1984).